欢迎访问胶质瘤公益网。源生疗法专注于针灸拨罐中医治疗脑胶质瘤,不开刀不手术治疗胶质瘤,已经治愈众多脑胶质瘤患者。 中医治疗脑胶质瘤创造生命奇迹!
您当前所在位置:首页>>胶质瘤

源生疗法
专家介绍:

姓名:李源生
职称:胶质瘤专家
擅长疾病:胶质瘤、脑干胶质瘤
简介:源生针刺加拨罐治疗脑胶质瘤,开创了中医治疗新方法针灸加拨罐,源生疗法是一种有效治疗胶质瘤、脑干胶质瘤的疗法,多年来治疗众多的脑胶质瘤患者。


源生疗法

RNA研究RNAi实验成功的秘诀

来源:147采集|发布时间:2022-05-23|浏览次数:211

RNAi实验成功的秘诀

导语

艾博思生物专业的RNAi产品和服务提供商,艾博思给您分享RNAi实验的秘诀!

1.RNAi回复实验

RNA干扰回复实验(Rescue Experiment):是RNAi一种十分有价值的对照实验来证明siRNA的作用特异性,避免Off-target效应。

回复实验是通过表达目的蛋白的方式回复RNAi的表型效应。目前有两种策略可以检测siRNA效用是通过沉默目的靶标而直接引起的表型效应。

A)用一个带有沉默突变(Silent mutations)cDNA表达质粒回复RNAi表型。(突变型和野生型载体构建见艾博思基因合成

B)用野生型的ORF cDNA表达质粒与3UTR区的siRNA组合回复RNAi表型。

实验小提示:过表达蛋白时候可以加一个标签蛋白,这样可以区分内源性和外源性目的蛋白。

RNAi需要完备的对照体系

siRNA对照,包括普通的阴性对照、荧光标记的阴性对照和siRNA阳性对照

阴性对照:通过打乱最活跃的siRNA碱基序列排列,可以设计一个适当的阴性对照。一定要做好同源性搜索,以确保它与正在研究的生物体基因组缺乏同源性。

荧光标记的阴性对照:荧光标记的siRNA可用于分析siRNA的稳定性和转染效率。标记的siRNA也可用于研究siRNA的亚细胞定位,并可在双标记实验中(使用标记的抗体),追踪转染过程中转入siRNA的细胞以及转染关联的靶标蛋白下调。

阳性对照:对于大部分细胞,管家基因适合作为阳性对照。向靶标细胞转染几个浓度的、对您所选择的阳性对照特异的siRNA。(这也适用于您的试验靶标siRNA。) 转染48小时后,测量对照蛋白或mRNA水平相对于未转染细胞的减少量。太多的siRNA能导致细胞毒性和死亡。艾博思提供适用于各种靶标基因的阳性对照siRNA,常用GAPDH,P53, beta-actin等基因的验证有效的 siRNA(Validated siRNA)。

艾博思生物提醒您:千万别忽视了阳性对照设置,现在发文章是需要提供阳性对照的实验数据的哦!

Mock对照:转染试剂对照组,转染试剂对细胞毒性是影响基因表达的一个重要因素,低毒低剂量高效率转染试剂是您的首选。例如:lipo3000等等。

RNAi需要设计多个有效的siRNA

为了找到一个潜在的靶点,分析感兴趣基因的全长寻找氨基酸序列。记录氨基酸和3′ 19核苷酸作为潜在的siRNA靶点。潜在的靶点随后通过对GenBank数据库的BLAST分析进行评估,去掉任何与其他基因有显著同源性的靶序列。如果可能的话,应该针对含有更少二级结构的靶mRNA区域设计siRNA。每个基因设计并测试两到四条有效的siRNA序列。有效的靶标的表型效应趋向于一致性,并且呈现相应剂量效应。(请选择艾博思生物RNAi套装

艾博思siRNA设计公式避免同源基因的脱靶效应,选择的siRNA与同源基因之间至少2个或者2个以上的错配碱基。

RNAi需要低毒性和高效价的siRNA有效靶点

科研级或者医药级别的siRNA有效序列筛选需要多RNAi进行浓度梯度设置,设置不同浓度梯度,筛选出的有效序列,一定有效浓度低,效率高的靶点,而且效率高外还需要脱靶效应也低。

RNAi有效靶点需要做广谱分析

siRNA有效序列会造成干扰素效应或者毒性以及次级效应。由此通过基因芯片或者RNA-seq的方法检测广谱的基因表达是观察靶点有效性和特异性最直接的证据。(艾博思生物提供基因芯片和RNA-seq服务

RNAi有效靶点需要在mRNA和蛋白两个水平进行验证

siRNA有效序列需用qRT-PCR和WB在mRNA和蛋白水平进行验证。如果在蛋白水平有高干扰效果而mRNA水平没有变化甚至上调,说明可能是通过类似miRNA方式发生作用而不是通过经典RNAi使得mRNA降解的方式。

参考文献


Elbashir SM, Martinez J, Patkaniowska A, Lendeckel W, Tuschl T (2001) Functional anatomy of siRNAs for mediating efficient RNAi in Drosophila melanogaster embryo lysate. EMBO 20(23):6877–88.

Miller VM, Xia H, Marrs GL, Gouvion CM, Lee G, Davidson BL, Paulson HL (2003) Allele-specific silencing of dominant disease genes. Proc Natl Acad Sci USA 100(12):7195–200.

Semizarov D, Frost L, Sarthy A, Kroeger P, Halbert DN, Fesik SW (2003) Specificity of short interfering RNA determined through gene expression signatures. Proc Natl Acad Sci USA 100(11):6347–52.

Jackson AL, Bartz SR, Schelter J, Kobayashi SV, Burchard J, Mao M, Li B, Cavet G, Linsley PS (2003) Expression profiling reveals off-target gene regulation by RNAi. Nature Biotechnol 21(6):635–7.

Persengiev SP, Zhu X, Green MR (2004) Nonspecific, concentration-dependent stimulation and repression of mammalian gene expression by small interfering RNAs (siRNAs). RNA 10:12–18.

Yang D, Buchholz F, Huang Z, Goga A, Chen C-Y, Brodsky FM, Bishop MJ (2002) Short RNA duplexes produced by hydrolysis with Escherichia coli RNase III mediate effective RNA interference in mammalian cells. Proc Natl Acad Sci USA 99:9942–7.

Calegari F, Haubensak W, Yang D, Huttner WB, Buchholz F (2002) Tissue-specific RNA interference in post-implantation mouse embryos with endoribonuclease-prepared short interfering RNA. Proc Natl Acad Sci USA 99:14236–40.

Editorial (2003) Whither RNAi? Nature Cell Biology 5:263–4.

Chi J-T, Chang HY, Wang NN, Chang DS, Dunphy N, Brown PO (2003) Genomewide view of gene silencing by small interfering RNAs. Proc Natl Acad Sci USA 100: 6343–6.

Dillin A (2003) The specifics of small interfering RNA specificity. Proc Natl Acad Sci USA 100(11): 6289–91.

Doench JG, Peterson CP, Sharp PA (2003) siRNAs can function as miRNAs. Genes Dev 17: 438–42.

Fath et al. (2011) Multiparameter RNA and Codon Optimization: A Standardized Tool to Assess and Enhance Autologous Mammalian Gene Expression. PLOS One 6:3.

回复关键字,查看你感兴趣的内容:

回复lncRNA技术专栏查看相关文章

回复exosome查看相关文章

回复miRNA必备的知识查看相关文章

回复ceRNA查看相关文章

回复tRNA查看相关文章


核酸研究,找艾博思生物!核酸

艾博思生物专注于核酸研究,关注请加微信号:ibsbio或扫描下方二维码。